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菌落总数实验报告

36℃±1℃48h±2h.2、检样与接种：25g（ml）样品+225ml稀释液，均质，10倍系列稀释选择2个～3个适宜稀释度的样品匀液，各取1ml分别加入无菌培养皿内。
用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1ml，沿管壁缓慢注于盛有9ml稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100的样品匀液。
.按上述操作程序，制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1次1ml无菌吸管或吸头。
.根据对样品污染状况的估计，选择2个～3个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10倍递增稀释时，吸取1ml样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1ml空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。
3、倒平板：在酒精灯开着的条件下进行到培养皿的 3分之一即
可，而其中琼脂的温度需要在46℃即可倒入琼脂，不然会影响其细菌的生长繁殖。平板计数琼脂培养基，混匀.4、培养：待琼脂凝固后，将平板翻转，36℃±1℃培养48h±
2h。水产品30℃±1℃培养72h±3h。如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基（约4ml），凝固后翻转平板，
5、报告
6.菌落计数
可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。
菌落计数以菌落形成单位（colony-formingunits，CFU）表示。
6.1选取菌落数在30CFU～300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30CFU的平板记录具体菌落数，大于300CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。
6.2其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。
6.3当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。
7结果与报告
菌落总数的计算方法若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g（ml）样品中菌落总数结果。
若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公式（1）计算：
N=∑C/（N1+d ?（1）
式中：
N——样品中菌落数；ΣC——平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；
n1——第一稀释度（低稀释倍数）平板个数；n2——第二稀释度（高稀释倍数）平板个数；
d——稀释因子（第一稀释度）。
上述数据按数字修约后，表示为25000或×104。
若所有稀释度的平板上菌落数均大于300CFU，则对稀释度最高的平板进行计数，其他平板可记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。
若所有稀释度的平板菌落数均小于30CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。
若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于1乘以最低稀释倍数计算。
若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU～300CFU之间，其中一部分小于30CFU或大于300CFU时，则以最接近30CFU或300CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。
菌落总数的报告
菌落数小于100CFU时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。
菌落数大于或等于100CFU时，第3位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前2位数字，后面用0代替位数；也可用10的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。
若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。
若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。
称重取样以CFU/g为单位报告，体积取样以CFU/mL为单位报
四、数据处理及结果计算
一、乐棒棒菌落总数的数据分析^p
稀释倍数
平板个数
空白
1细菌菌
落数
2细菌菌
落数
3细菌菌
落数
10
0
37
39
38
100
0
5
8
0
1000
0
0
0
0
若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g（ml）样品中菌落总数结果。
所以：N=37+38+39/3×10
N=380个/g
二、奇爽菌落总数的数据分析^p
稀释倍数
平板个数
空白
1
2
3
10
0
267
281
295
100
0
44
34
29
1000
0
4
0
6
若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公
式（1）计算：
N=
N= ∑C/(N1+d 1）
式中：
式中：
N——样品中菌落数；ΣC——平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之